Khảo sát điều kiện chiết xuất quercetin và bào chế viên nang chứa cao hành tím (Allium ascalonicum L.) giàu quercetin
Các tác giả
DOI: https://doi.org/10.59294/HIUJS2026104Từ khóa:
quercetin, tối ưu hóa, Allium ascalonicum L., viên nang cứngTóm tắt
Đặt vấn đề: Hành tím (Allium ascalonicum L.) là nguồn giàu quercetin với nhiều hoạt tính sinh học quan trọng như chống oxy hóa, kháng viêm ... Tuy nhiên, hiệu suất thu hồi và khả năng ứng dụng phụ thuộc vào điều kiện chiết xuất, dạng bào chế phù hợp. Mục tiêu: Khảo sát các yếu tố ảnh hưởng đến chiết xuất quercetin từ hành tím và phát triển viên nang chứa cao chiết. Đối tượng và phương pháp nghiên cứu: Khảo sát lần lượt (OFAT) các yếu tố: nồng độ ethanol (50 - 90%), tỷ lệ dược liệu/dung môi (1:1 - 1:20 g/mL), thời gian (14 - 22 giờ) và nhiệt độ (phòng đến 70°C). Hàm lượng quercetin được định lượng bằng HPLC-UV/Vis. Cao đặc thu được được sử dụng để xây dựng công thức viên nang cứng thông qua tối ưu tỷ lệ tá dược hút và tá dược trơn. Kết quả: Điều kiện chiết thích hợp là ethanol 70%, tỷ lệ 1:5 (g/mL), thời gian 20 giờ, nhiệt độ phòng, cho hàm lượng quercetin đạt 7.31 ± 0.03 mg/g cao khan. Công thức viên nang với tỷ lệ cao khan : Florite® = 2.25 : 1 và Talc 3% cho cốm chảy tốt, viên nang đạt độ đồng đều khối lượng, thời gian rã 10.7 ± 1.2 phút, hàm lượng quercetin đạt 1.24 ± 0.02 mg/viên. Kết luận: Nghiên cứu đã xây dựng thành công quy trình chiết xuất và bào chế viên nang chứa quercetin từ hành tím, tạo cơ sở cho ứng dụng thực tiễn.
Abstract
Background: Allium ascalonicum L., is a rich source of quercetin, which exhibits important biological activities such as antioxidant and anti-inflammatory effects, etc. However, the recovery efficiency and practical application depend on extraction conditions and appropriate dosage forms. Objectives: To investigate factors affecting the extraction of quercetin from shallot and develop capsule formulations containing the extract. Materials and methods: One-factor-at-a-time (OFAT) evaluation of ethanol concentration (50 - 90%), drug-to-solvent ratio (1:1 - 1:20 g/mL), time (14 - 22 hours), and temperature (room temperature to 70°C). Quercetin content was determined by HPLC-UV/Vis. The obtained thick extract was used to develop hard capsule formulations by optimizing the ratios of adsorbent and glidant excipients. Results: The optimal extraction conditions were 70% ethanol, a material-to-solvent ratio of 1:5 (g/mL), extraction time of 20 hours at room temperature, yielding a quercetin content of 7.31 ± 0.03 mg/g of dry extract. The capsule formulation consisted of with dried extract : Florite® = 2.25 : 1 and 3% talc produced granules with good flowability: weight uniformity, a disintegration time of 10.7 ± 1.2 minutes, and a quercetin content of 1.24 ± 0.02 mg/capsule. Conclusion: This study successfully established an optimized extraction process and developed capsule formulations containing quercetin from Allium ascalonicum L., thereby supporting future product development and commercialization.
Tài liệu tham khảo
[1] S. U. Lee et al., “Flavonoid Content in Fresh, Home-Processed, and Light-Exposed Onions and in Dehydrated Commercial Onion Products,” J. Agric. Food Chem., vol. 56, no. 18, pp. 8541-8548, 2008. DOI: 10.1021/jf801009p.
[2] J. Terao, “Potential Role of Quercetin Glycosides as Anti-Atherosclerotic Food-Derived Factors for Human Health,” Antioxidants, vol. 12, no. 2, p. 258, 2023. DOI: 10.3390/antiox12020258.
[3] I. Debnath et al., “Mechanistic Insights and Therapeutic Potential of Quercetin in Neuroprotection: A Comprehensive Review of Pathways and Clinical Perspectives,” BIO Integr., vol. 6, no. 1, 2025. DOI: 10.15212/bioi-2025-0073.
[4] A. Anand David, R. Arulmoli, and S. Parasuraman, “Overviews of biological importance of quercetin: A bioactive flavonoid,” Pharmacogn. Rev., vol. 10, no. 20, p. 84, 2016. DOI: 10.4103/0973-7847.194044.
[5] N. Kheyar-Kraouche, S. Boucheffa, Y. Bellik, K. Farida, and N. Brahmi-Chendouh, “Exploring the potential of Inula viscosa extracts for antioxidant, antiproliferative and apoptotic effects on human liver cancer cells and a molecular docking study,” BioTechnologia, vol. 104, no. 2, pp. 183-198, 2023. DOI: 10.5114/bta.2023.127207.
[6] R. Zhao et al., “Optimization, comparison and mechanism of ultrasound-assisted cellulase hydrolysis and ethanol extraction of quercetin, luteolin and apigenin from male inflorescences of Populus alba × berolinensis,” Ultrason. Sonochem., vol. 123, p. 107645, 2025. DOI: 10.1016/j.ultsonch.2025.107645.
[7] Y.-L. Ma et al., “Solvent effect on phenolics and antioxidant activity of Huangshan Gongju (Dendranthema morifolium (Ramat) Tzvel. cv. Gongju) extract,” Food Chem. Toxicol., vol. 147, p. 111875, 2021. DOI: 10.1016/j.fct.2020.111875.
[8] M. Jang, L. Asnin, S. H. Nile... S. W. Park, “Ultrasound‐assisted extraction of quercetin from onion solid wastes,” Int. J. Food Sci. Technol., vol. 48, no. 2, pp. 246-252, 2013. DOI: 10.1111/j.1365-2621.2012.03180.x.
[9] M. Horbowicz and T. Kotlinska, “Level of flavonols in wild and cultivated Allium species,” Acta Hortic., no. 517, pp. 375-380, 2000. DOI: 10.17660/ActaHortic.2000.517.47.
[10] Bộ Y tế, Dược điển Việt Nam V. Hà Nội: NXB Y Học, 2018.
[11] A. P. Tambunan, A. Bahtiar, and R. R. Tjandrawinata, “Influence of Extraction Parameters on the Yield, Phytochemical, TLC-Densitometric Quantification of Quercetin, and LC-MS Profile, and how to Standardize Different Batches for Long Term from Ageratum conyoides L. Leaves,” Pharmacogn. J., vol. 9, no. 6, pp. 767-774, 2017. DOI: 10.5530/pj.2017.6.121.
[12] S. Rodrigues, G. A. S. Pinto, and F. A. N. Fernandes, “Optimization of ultrasound extraction of phenolic compounds from coconut (Cocos nucifera) shell powder by response surface methodology,” Ultrason. Sonochem., vol. 15, no. 1, pp. 95-100, 2008. DOI: 10.1016/j.ultsonch.2007.01.006.
[13] M. R. González-Centeno, K. Knoerzer, H. Sabarez... A. Femenia, “Effect of acoustic frequency and power density on the aqueous ultrasonic-assisted extraction of grape pomace (Vitis vinifera L.) - A response surface approach,” Ultrason. Sonochem., vol. 21, no. 6, pp. 2176-2184, 2014. DOI: 10.1016/j.ultsonch.2014.01.021.
[14] W. Ma and K. H. Row, “Optimized extraction of bioactive compounds from Herba Artemisiae Scopariae with ionic liquids and deep eutectic solvents,” J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol., vol. 40, no. 9, pp. 459-466, 2017. DOI: 10.1080/10826076.2017.1322522.
[15] M. Gois Ruivo Da Silva, M. Skrt, D. Komes, N. Poklar Ulrih, and L. Pogačnik, “Enhanced Yield of Bioactivities from Onion (Allium cepa L.) Skin and Their Antioxidant and Anti-α-Amylase Activities,” Int. J. Mol. Sci., vol. 21, no. 8, p. 2909, 2020. DOI: 10.3390/ijms21082909.
[16] Z. J. Velisdeh et al., “Turning Waste into Wealth: Optimization of Microwave/Ultrasound-Assisted Extraction for Maximum Recovery of Quercetin and Total Flavonoids from Red Onion (Allium cepa L.) Skin Waste,” Appl. Sci., vol. 14, no. 20, p. 9225, 2024. DOI: 10.3390/app14209225.
[17] E. Y. Jin, S. Lim, S. O. Kim ... and Y. J. Choi, “Optimization of Various Extraction Methods for Quercetin from Onion Skin Using Response Surface Methodology,” Food Sci. Biotechnol., Vol. 20, No. 6, pp. 1727-1733, 2011. DOI: 10.1007/s10068-011-0238-8.
[18] I. M. Savic-Gajic, I. M. Savic, and V. D. Nikolic, “Modelling and optimization of quercetin extraction and biological activity of quercetin-rich red onion skin extract from Southeastern Serbia,” J. Food Nutr. Res., vol. 57, no. 1, pp. 15-26, 2018.
[19] V. Imeneo, A. De Bruno, A. Piscopo, R. Romeo, and M. Poiana, “Valorization of ‘Rossa di Tropea’ Onion Waste through Green Recovery Techniques of Antioxidant Compounds,” Sustainability, vol. 14, no. 8, p. 4387, 2022. DOI: 10.3390/su14084387.
[20] M. Jang, L. Asnin, S. H. Nile... S. W. Park, “Ultrasound‐assisted extraction of quercetin from onion solid wastes,” Int. J. Food Sci. Technol., vol. 48, no. 2, pp. 246-252, 2013. DOI: 10.1111/j.1365-2621.2012.03180.x.
[21] P. J. Sheskey, B. C. Hancock, G. P. Moss, and D. J. Goldfarb, Handbook of Pharmaceutical Excipients, 9th ed. London: Pharmaceutical Press, 2020.
Tải xuống
Tải file: 0
