Xác định thành phần hóa thực vật và hoạt tính kháng oxy hóa của hoa Khế (Averrhoa carambola L.)
Các tác giả
DOI: https://doi.org/10.59294/HIUJS2025092Từ khóa:
hoa Khế, Averrhoa carambola L., thành phần hóa thực vật, hoạt tính chống oxy hóaTóm tắt
Đặt vấn đề: Hoa khế (Averrhoa carambola L.) là một bộ phận ít được nghiên cứu của cây khế, mặc dù thường được sử dụng trong y học cổ truyền để điều trị các bệnh như viêm họng, ho và tiêu đờm. Mục tiêu nghiên cứu: Nghiên cứu này được thực hiện nhằm khảo sát thành phần hóa thực vật và đánh giá hoạt tính chống oxy hóa in vitro của hoa khế. Đối tượng và phương pháp nghiên cứu: Thành phần hóa học và đánh giá hoạt tính chống oxy hóa thông qua các thử nghiệm định tính hóa học, sắc ký lớp mỏng (TLC), xác định hàm lượng polyphenol tổng bằng phương pháp UV-Vis và hai thử nghiệm chống oxy hóa bao gồm phản ứng khử kali pemanganat và khả năng quét gốc tự do DPPH. Kết quả: Hoa khế chứa nhiều nhóm chất sinh học như flavonoid, saponin, proanthocyanidin, tannin, … Hàm lượng polyphenol tổng cao cồn 0.54 ± 0.96 mg GAE/g dược liệu và cao nước 1.78 ± 0.41 mg GAE/g dược liệu. Mẫu thử cho thấy hoạt tính chống oxy hóa với IC50 trong thử nghiệm khử KMnO4 lần lượt là 52,497.22 µg/mL (cao cồn) và 19,353.20 µg/mL (cao nước); trong thử nghiệm DPPH là 1,504.54 µg/mL (cao cồn) và 1,039.42 µg/mL (cao nước). Kết luận: Các kết quả cho thấy hoa khế có khả năng chống oxy, là nguồn nguyên liệu tiềm năng có thể ứng dụng trong ngành dược phẩm.
Abstract
Background: The flower of Starfruit (Averrhoa carambola L.) is a less-studied part of the plant, despite its frequent use in traditional medicine to treat ailments such as sore throat, cough, and phlegm reduction. Objectives: This study was conducted to investigate the phytochemical constituents and evaluate the in vitro antioxidant activity of starfruit flowers. Materials and method: Chemical composition and evaluation of antioxidant activity through qualitative chemical tests, thin layer chromatography (TLC), determination of total polyphenol content by UV-Vis method and two antioxidant tests including potassium permanganate reduction and DPPH. Results: The results revealed that the flower extracts contained various bioactive compound groups, including flavonoids, saponins, proanthocyanidins, tannins, and reducing substances. The total polyphenol content was 0.54 ± 0.96 mg GAE/g of medicinal herb for the ethanol extract and 1.78 ± 0.41 mg GAE/g of medicinal herb for the water extract. Antioxidant assays showed significant activity, with IC50 values of 19,353.20 µg/mL (aqueous extract) and 52,497.22 µg/mL (ethanol extract) in the KMnO4 method; and 1,039.42 µg/mL (aqueous) and 1,504.54 µg/mL (ethanol) in the DPPH assay. Conclusion: The results show that antioxidant-resistant flowers are a source of raw materials that can be applied in specialized pharmaceutical products.
Tài liệu tham khảo
[1] F. Luan, et al., “A comprehensive review of Averrhoa carambola L.: Botany, traditional uses, phytochemistry, pharmacology and toxicity,” J. Ethnopharmacol., vol. 268, p. 113567, 2021.
[2] K. Lakmal, et al., “Health benefits and adverse effects of star fruit (Averrhoa carambola): A comprehensive review,” Food Frontiers, vol. 2, no. 3, pp. 432-444, 2021.
[3] N. S. Ramadan, et al., “Anti-obesity and anti-diabetic potential of Averrhoa carambola methanol leaf extract: In vivo and in vitro studies,” Biomedicine & Pharmacotherapy, vol. 147, p. 112620, 2022.
[4] M. S. Abduh, et al., “Antioxidant and hypolipidemic effects of Averrhoa carambola L. leaves in high-fat diet rats,” J. Adv. Pharm. Technol. Res., vol. 14, no. 1, pp. 1-7, 2023.
[5] D. A. Cabrini, et al., “Anti-inflammatory effects of some plants used in Brazilian traditional medicine,” Fitoterapia, vol. 82, no. 5, pp. 556-563, 2011.
[6] I. C. F. R. Ferreira, et al., “Antioxidants in wild mushrooms,” Curr. Med. Chem., vol. 16, no. 12, pp. 1543-1560, 2009.
[6]. I.Ciulei, “Practical manuals on the industrial utilization of chemical and aromatic plants: methodology for analysis of Vegetable drugs”, Ministry of Chemical Industry, Bucharest (1st edition), Vol. 1, 1-67, 1982.
[7] S. Singleton and J. Rossi, “Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents,” Am. J. Enol. Vitic., vol. 16, no. 3, pp. 144-158, 1965.
DOI: https://doi.org/10.5344/ajev.1965.16.3.144[8] V. L. Singleton, R. Orthofer, và R. M. Lamuela-Raventós, “Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent,” Methods in Enzymology, vol. 299, pp. 152-178, 1999.
DOI: https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1[9] D. Huang, B. Ou, and R. L. Prior, “The chemistry behind antioxidant capacity assays,” J. Agric. Food Chem., vol. 53, no. 6, pp. 1841-1856, 2005.
DOI: https://doi.org/10.1021/jf030723c[10] I. K. Amponsah, E. Orman, A. Y. Mensah, F. M. Sarpong, F. A. Armah, L. M. Sarpong, “Development and validation of a radical scavenging antioxidant assay using potassium permanganate,” Journal of Scientific and Innovative Research, vol. 5, no. 2, pp. 36-42, Apr. 2016.
DOI: https://doi.org/10.31254/jsir.2016.5202[11] Shabir A. Mir, “A photometric permanganate reduction assay for evaluating antioxidants,” International Journal of PharmTech Research, vol. 9, no. 1, pp. 50-59, 2016.
[12] P. M. Dewick, Medicinal Natural Products: A Biosynthetic Approach, 3rd ed., Wiley, 2009.
DOI: https://doi.org/10.1002/9780470742761[13] M. S. Blois, “Antioxidant determinations by the use of a stable free radical,” Nature, vol. 181, no. 4617, pp. 1199-1200, 1958. doi: 10.1038/1811199a0.
DOI: https://doi.org/10.1038/1811199a0[14] J. B. Harborne, “Phytochemical Methods: A Guide to Modern Techniques of Plant Analysis,” Springer, 1998.
[15] I. C. F. R. Ferreira, et al., “Antioxidants in wild mushrooms,” Curr. Med. Chem., vol. 16, no. 12, pp. 1543-1560, 2009.
DOI: https://doi.org/10.2174/092986709787909587Tải xuống
Tải xuống: 13




